PLANTACIÓN: LA LECHUGA

Materiales:

1. - 16 yogures vacíos  con un agujero en la parte inferior del yogur.
2. - Tierra.
3. - 48 semillas en total. En  cada recipiente  tres  semillas.
4. - Agua.
5. - Bandeja para depositar la plantas.
6. - Regla para las mediciones.

 Técnica:

Metemos tierra en los recipientes de  yogurt hasta la mitad, después cogemos  tres semillas y las echamos en cada recipiente; tapamos las semillas con la tierra y a  continuación las regamos. Cada día  las medimos con la regla  y las regamos hasta que lleguen al punto en que se puedan transplantar.

Mediciones o resultado:

Fecha de siembra (18-3-14)	Germinación (28-3-14)	Medición (4-4-14)	Medición (7-4-14)	Medición (11-4-14)	Medición (25-4-14)	Medición (2-5-14)	Medición (6-5-14)	Medición (9-5-14)	Medición (13-5-14)	Medición (16-5-14)
1ª maceta	1)1   cm 2)0,5 cm 3)0,25cm	1)1,25cm 2)0,75cm 3)0,75cm	1)1,75cm 2)1,50cm 3)1,50cm	1)3cm 2)2,75cm 3)2,25cm	1)3,75cm 2)3,50cm 3)3cm	1)4,50cm 2)4,25cm 3)3,75cm	1)5cm 2)5,25cm 3)4,50cm	1)5,75cm 2)6,25cm 3)5,50cm	1)6,50cm 2)7cm 3)6cm	1)7.25cm 2)7,75cm 3)6,50cm
2ª maceta	1)1cm 2)1cm	1)1,50cm 2)1,50cm	1)2,25cm 2)2cm	1)2,75cm 2)3cm	1)3,75cm 2)3,50cm	1)4,50cm 2)4,75cm	1)5cm 2)5,50cm	1)5,50cm 2)6cm	1)6cm 2)6,25cm	1)6,25cm 2)6,50cm
3ª maceta	1)0,25cm 2)0,50cm 3)0,75cm	1)1cm 2)1,25cm 3)1,50cm	1)1,50cm 2)2cm 3)2,50cm	1)2,50cm 2)2,25cm 3)3,75cm	1)3 cm 2)3,50cm 3)4,50cm	1)4cm 2)4,25cm 3)5,75cm	1)4,50cm 2)5cm 3)6,50cm	1)5,25cm 2)5,50cm 3)7cm	1)6cm 2)6cm 3)7,50cm	1)6,50cm 2)6,25cm 3)8cm
4ª maceta	1)1cm	1)1,75cm	1)2,50cm	1)3,25cm	1)3,75cm	1)4,50cm	1)5cm	1)5,50cm	1)6cm	1)6,50cm
5ª maceta	1)1cm 2)0,50cm 3)0,25cm	1)1,25cm 2)1cm 3)1cm	1)2,25cm 2)2cm 3)2,25cm	1)3cm 2)3cm 3)3,50cm	1)3,50cm 2)3,50cm 3)4cm	1)4,50cm 2)4,25cm 3)4,50cm	1)5,25cm 2)5cm 3)5,25cm	1)5,75cm 2)5.25cm 3)6cm	1)6,50cm 2)6cm 3)6,75cm	1)7cm 2)6,25cm 3)7,50cm
6ª maceta	1)1cm 2)0,50cm	1)1,50cm 2)0,75cm	1)2,25cm 2)1,50cm	1)2,75cm 2)2cm	1)3,25cm 2)2,75	1)4,25cm 2)3,50cm	1)5cm 2)4,25cm	1)5,50cm 2)4,50cm	1)6,25cm 2)5cm	1)7cm 2)5,50cm
7ª maceta	1)0,25cm	1)0,75cm	1)2cm	1)2,75cm	1)3,50cm	1)4,25cm	1)5cm	1)5,25cm	1)6cm	1)6,50cm
8ª maceta	1)1cm                   2)0,5 cm 3)0,75cm	1)1,75cm 2)1,25cm 3)1,25cm	1)2,25cm 2)2,25cm 3)2,50cm	1)3,25cm 2)3cm 3)3,50cm	1)3,75cm 2)3,50cm 3)4cm	1)4,50cm 2)4cm 3)4,50cm	1)5cm 2)4,75cm 3)5,25cm	1)5,75cm 2)5,25cm 3)6cm	1)6,25cm 2)5,75cm 3)6,50cm	1)6,50cm 2)6,25cm 3)7cm
9ª maceta	1)0,75cm 2)0,50cm	1)1cm 2)0,75cm	1)2,25cm  2)1,75cm	1)3,50cm 2)2,50cm	1)4cm 2)3cm	1)4,50cm 2)3,75cm	1)5cm 2)4,50cm	1)5,25cm 2)5,25cm	1)5,75cm 2)5,50cm	1)6cm 2)5,75cm
10ª maceta	1)0,50cm 2)0,25cm	1)1,25cm 2)0,50cm	1)2,25cm 2)2,25cm	1)3cm 2)3cm	1)3,75cm 2)3,75cm	1)4,50cm 2)4,25cm	1)5cm 2)5cm	1)5,50cm 2)5,75cm	1)6cm 2)6,25cm	1)6,50cm 2)6,25cm
11ª maceta	1)1cm 2)0,75cm	1)1,50cm 2)1cm	1)2,75cm 2)2,25cm	1)3,50cm 2)4,25cm	1)4cm 2)5cm	1)4,75cm 2)5,50cm	1)5,50cm 2)6,25cm	1)6,50cm 2)7cm	1)7cm 2)7,25cm	1)7,25cm 2)7,25cm
12ª maceta	1)0,75cm	1)1,25cm	1)2,50cm	1)3,75cm	1)4,50cm	1)5cm	1)5,50cm	1)6cm	1)6,25cm	1)6,50cm
13ª maceta	1)1cm 2)1cm	1)1,25cm 2)1,50cm	1)2,75cm 2)2,25cm	1)3,50cm 2)2,50cm	1)4cm 2)3cm	1)4,75cm 2)3,50cm	1)5,25cm 2)4cm	1)5,75cm 2)4,50cm	1)6,25cm 2)5cm	1)6,50cm 2)5,50cm
14ª maceta	1)0,50cm 2)0,25cm	1)1,50cm 2)0,75cm	1)2,25cm 2)2cm	1)3cm 2)3cm	1)3,75cm 2)3,50cm	1)4,25cm 2)4cm	1)5cm 2)4,50cm	1)5,50cm 2)5cm	1)6cm 2)5,50cm	1)6,25cm 2)5,50cm
15ª maceta	1)1cm 2)0,50cm	1)1,50cm 2)1cm	1)2,75cm 2)2,25cm	1)3,50cm 2)3cm	1)4cm 2)3,50cm	1)4,75cm 2)4cm	1)5,25cm 2)4,50cm	1)6cm 2)5cm	1)6,25cm 2)5,50cm	1)6,50cm 2)5,75cm
16º maceta	1)0,50cm	1)1cm	1)2,25cm	1)2,75cm	1)3,50cm	1)4cm	1)4,25cm	1)4,50cm	1)5cm	1)5,25cm



POLISACÁRIDOS DEL ALMIDÓN

Materiales:
- Tubos de ensayo con gradillas
- Mechero de alcohol
- Pinzas
- Pipetas con pipeteador automático
- Solución al 5% de almidón
- Solución de lugol

Técnica:
- Cogemos un tubo de ensayo y echamos 3ml de almidón, a continuación se añaden 3 gotas de la solución del lugol. Después se calienta el tiempo suficiente y sin que se llegue a hervir. Luego, se tiene que esperar hasta que el experimento cambie de color y lo dejamos que se enfríe el tiempo suficiente y por último observamos y anotamos los resultados exactos.

Resultados:
- El almidón no llega a cambiar su color asi que el experimento que realizamos nos dió negativo.

Conclusión:
- En esta hipótesis o experimento mas bien, obtuvimos los resultados esperados.

HIDRÓLISIS DE LA SACAROSA

Materiales:
- Tubos de ensayo con gradilla
- Pipetas con pipeteador automático
-Solución al 5% de sacarosa
- Ácido clorhídrico o HCl
- Solución alcalina
- Reactivos de felhing A y B
- Mechero
- Pinzas
  
Técnica:
- Primero hechamos 10 gotas de HCl diluido y lo mezclamos con 3 ml de sacarasora. Después se agita y lo calentamos durante 5 minutos aproximadamente. A continuación se deja que se enfríe y se neutraliza echando 3ml de solución acalina. Luego, realizamos la prueba con los radiactivos de Felhing A y B como lo hemos hecho anteriormente en el reconocimiento de glúcidos y si los resultados nos dan negativo es que no es reductor y  si nos da positivo entonces será reductor.

Resultado:
- En el experimento la hidrólisis de la sacarosa nos dió positiva y eso quiere decir que es reductor.

Conclusión:
- En esta hipótesis la hidrólisis de la sacarosa nos dió positivamente y por lo tanto es reductor, que este es el resultado que esperabamos obtener de este experimento.

TIPOS DE RECONOCIMIENTO DE PRÓTIDOS

RECONOCIMIENTO DE PRÓTIDOS 1

Materiales:
- Tres tubos de ensayo con una gradilla
- Pipetas con pipeteador automático
- Alcohol etílico
- Ácido clorhídrico o HCl
- Mechero Bunsen
- Base soporte
- Vaso de precipitados

Técnica:
- En cada tubo de ensayo echamos aproximadamente 3ml de leche con la pipeta. En el primer tubo de ensayo lo ponemoss al baño maría unos 20 o 30 minutos, en el segundo tubo de ensayo echamos 3ml de ácido clorhídrico y después se agita. Ya en el último tubo de ensayo se echa 3ml de alcohol etílico y a continuación se agita como el anterior. Una vez terminados los experimentos, los observamos y damos los resultados de todos ellos.

Resultados:
- En el tubo de ensayo que contenía alcohol etílico y en el  que pusimos al baño maría, estos la leche no se condensó,  pero en el que echamos ácido clorhídrico la leche si se condensó. 

Conclusión:
- Todos los resultados nos dieron exactamente como esperamos.


                   

    La leche expuesta al baño maría                                    Leche con alcohol etílico a la izquierda
                                                                                        Leche con ácido clorhídrico a la derecha

RECONOCIMIENTO DE PRÓTIDOS 2

Materiales:
-Dos tubos de ensayo con una gradilla
- Pipetas con pipeteador automático
- Sulfato de Cobre al 1%(SO4Cu)
-Solución de albúmina al 2%
-Hidróxido de Sodio al 20% (NAOH)
-Agua

Técnica:
- Realizamos un experimento de prueba para prácticar primero, pero cambiando la Albúmina por el agua.  Echamos 3ml de agua, 5 gotas de Sulfato de Cobre al 1% y por último, 3ml de Hidróxido de Sodio al 20%. A continuación los mezclamos y los agitamos. Ahora realizamos el experimento de verdad, echamos 3ml de Albúmina al 2%, 5 gotas de Sulfato de Cobre al 1% y por último, 3ml de Hidróxido de Sodio al 20% después se mecla y se agita. A continuación osbervamos los resultados que hemos obtenido   

Resultados:
- En el experimento que utilizamos agua dió negativo pero en el que usamos Albúmina  salio positivo.

Conclusión:
- Este experimento nos salió correcto debido a que el experimento de prueba que hicimos determina el resultado de  la Albúmina.

 
                                                 A la izquieda esta el experimento de prueba
                                                 A la derecha esta el experimento verdadero

EXTRACCIÓN DEL ADN

 Materiales:
- Riñon
- Arena
- Moretero
- Tubo de ensayo con gradilla
- Alcohol etílico
- Embudo
- Colador
- Disolución tampón: detergente, bicarbonato, sal y agua

Técnica:
- Cogemos el riñon del animal y lo machamos con el mortero hasta que quede hecho una especie de papilla. Después cogemos la disolución tampón y la mezclamos con la papilla. A continuación se echa la mezcla en el colador para quitar los trozos que no se han machado anteriormente y el líquido sobrante lo vertemos en un tubo de ensayo hasta que llegue a unos 5ml aproximadamente. Trás haber hecho eso, se echa 5ml de alcohol etílico y observamos los resultados obtenidos en el experimento.

Resultados:
- El alcohol etílico queda en la parte superior del tubo de ensayo y en la parte inferior queda la solución del riñon y poco a poco va ascendiendo el ADN  hacia arriba.

Conclusión: 
- El ADN subió hacia arriba, asi que conseguimos los resultados esperados.

                                                                     Extración del ADN

RECONOCMIENTO DE GLÚCIDOS

Materiales:
-10 tubos de ensayo con una gradilla.
-Soluciones al 5% de glucosa, almidón, lactosa, sacarosa y fructosa.
-Pipetas: una de 2ml y otra de 10 ml.
-Pipeteador automático.
-Reactivos  de Felhing A y B.
-Mechero de alcohol.
-Pinza


Técnica:

Primero, cogemos 3ml del glúcido que deseamos experimentar y se mezcla 1ml con los reactivos de Felhing

( AyB). Después se mueve en tubo de ensayo para mezclarlos bien y a continuación se calienta con el mechero hasta que el experimento cambie a un color diferente al que ha comenzado.

Si el glúcido se vuelve de un color rojizo, se dice que es reductor y si el glúcido se vuelve de un color verdoso decimos que no es reductor.

Resultados de los experimentos o glúcidos:
-Glucosa: reductor
-Almidón: no reductor
-Lactosa: reductor
-Sacarosa: no reductor
-Fructosa: reductor


Conclusión:

Con el único glúcido que no tuvimos los resultados esperados fue con la sacarosa. Al principio, nos salió reductor, así que lo tuvimos que volver hacer. La segunda vez ya no salió,  la sacarosa no era reductor y ya nos salió como esperábamos.

Glucosa

+

 

Almidón después del experimento

Fructosa (izquierda), lactosa (centro), sacarosa (derecha).
La sacarosa dio negativo en un experimento en el que no mezclamos las pipetas

LÍPIDOS

SOLUBILIDAD


Materiales:
-Dos tubos de ensayo con gradilla.
-Agua.
-Acetona.
- Pipetas con pipeteador automático-aceite.


Técnica:
- Se coge el primer tubo de ensayo, se mezclan 2ml de agua con 2 ml de aceite y en el segundo, se mezclan 2ml de acetona con 2ml de aceite. Después se agita y tenemos que ver los resultados que nos han dado.


Resultados:
- El agua con el aceite no se mezcla pero la acetona y el aceite si se llegan a mezclar.


Conclusión:
-Nuestro grupo obtuvo los resultados esperados.

aceite con agua a la izquierda y con acetona a la derecha

TINCIÓN


Materiales:
- Dos tubos de ensayo con gradilla.
- Pipetas con pipeteador automático-aceite.
- Tinta china.
- Sudán.

Técnica:
- Se mezcla el aceite con la tinta china en un tubo de ensayo y en otro tubos de ensayo se mezcla el sudán y el aceite. A continuación se agitan los tubos de ensayo y se obtienen una serie de resultados.


Resultados:
-El aceite se mezcla perfectamente con el sudán, pero con la tinta china no se sabe con exactitud la mezcla si se hace o no.


Conclusión:
- Obtuvimos los resultados esperados.

aceite con sudan a la izquierda y con tinta china a la derecha

SAPONOFICACIÓN


Materiales:
- Tubos de ensayo con gradilla
-Pipetas con pipeteador automático.
-Mechero Bunsen con bombona y su base soporte.
- Vaso de precipitados
-Aceite
-Hidróxido sódico(NaOH)


Técnica:
- Se mezcla 2ml de aceite con 2ml de NaOH, se agita y después se pone al baño maría durante 20 o 30 minutos, a continuación observamos los resultados.


Resultados:
- Se forma jabón en la parte superior y debajo se encuentra el aceite.


Conclusión:
-Obtuvimos los resultados a pesar de que no se diferenciaban cada producto con exactitud.

saponificacion